Сбор кала правила

Какими травами лечить поджелудочную железу от панкреатита: домашний справочник

Сегодня мы рассмотрим, какими травами лечить поджелудочную железу, чтобы не навредить здоровью. Удивительно, но даже простая петрушка помогает побороть недуг, если ее грамотно использовать. Рассмотрим симптоматику и эффективный травяной сбор для профилактики и периодов обострения.

По каким причинам возникают проблемы с поджелудочной железой

Немного о поджелудочной железе:

  • относится к органам пищеварительной системы
  • находится за желудком, немного ниже
  • выполняет функцию внутренней секреции
  • регулирует выработку инсулина в человеческом организме
  • вырабатывает ферменты, которые переваривают в желудке пищу
  • чувствительна к грубой пище: сладкому, жирному, алкоголю
  • Когда вы ощущаете пульсирующую, временами острую боль внутри корпуса под ребрами – это воспаленная поджелудочная железа. Процесс называют панкреатитом. Он охватывает или отдельную часть железы, или распространяется на все ткани органа. Возникает воспаление по разным причинам – от переедания калорийной пищи до болезни желчного пузыря, интоксикации или перенесенного после физической или моральной травмы шока. В 80% случав панкреатит наступает после сильной интоксикации из-за алкоголя или «тяжелых» продуктов.

    При хроническом воспалении поджелудочной железы возникает сахарный диабет, когда сосуды органа поражает атеросклероз. Риск также повышает наследственная предрасположенность и ожирение организма. Признак заболевания – регулярная сухость ротовой полости, которая не проходит с удалением жажды водой.

    Чтобы не нарушать тонкий баланс организма химическими медицинскими препаратами, прибегают к травам и фитосборам. Средства принимают после консультации с врачом, а приобретают без рецепта в аптеке. Далее рассмотрим, какими травами лечить поджелудочную железу, чтобы очистить сосуды органа от жиров и холестерина, вывести токсины из организма. На практике этот метод народной медицины показывает результаты сопоставимые как от медикаментов.

    Основные недуги, которые возникают из-за поджелудочной железы – это панкреатит и сахарный диабет. В обоих случаях для лечения применяют народную медицину: лечение травами.

    Симптоматика: определяем, как и где болит поджелудочная железа

    Панкреатит: бывает хронический и обостренный.

    Хронический: симптомы выражены слабо, не на постоянной основе. Дискомфорт и боли в области живота под ребрами возникают спонтанно: после физической перегрузки, переедания, употребления алкоголя. На симптомы вовремя обращают внимание только 4 из 10 человек. Это несет опасность: за длительное время здоровые клетки органа замещаются соединительными тканями, и железа не может нормально вырабатывать инсулин и ферменты для пищеварения.

    Симптомы: тупя боль, вздутие под ребрами, тяжести в левой части корпуса, снижение толерантности организма к глюкозе. Характерное течение хронического панкреатита – чередование периодов обострения и ремиссий.

    Острый: возникает из-за резкого воспалительного процесса клеток железы. Симптомы: резкая боль под левым ребром, приступ слабости и тошноты, расстройство работы кишечника, снижение аппетита. В тяжелых случаях дискомфорт ощутим в левой части спины в области лопатки.

    Важно: воспалительный процесс в поджелудочной железе определяют по трем признакам.

    Первый: резкая боль под левой частью ребер, резко нарастает после приемов пищи, отдает по всему корпусу.

    vselekari.com

    Правила сдачи анализов

    • Анализ крови
    • Анализ мочи
    • Анализ кала
    • Спермограмма
    • Бактериологические исследования (бакпосевы)
    • ПЦР исследования
    • Анализ крови

    • Kровь забирается строго натощак, до приема и введения лекарственных препаратов и до рентгеновского, эндоскопического и ультразвукового обследования. Не менее 8 часов и не более 14 часов голода, вода — в обычном режиме, накануне избегать пищевых перегрузок, грудным детям не следует есть 3-4 часа до забора крови.
    • Препараты, способные существенно влиять на результаты исследования, должны быть заранее отменены, кроме случаев контроля за лечением данным препаратом.
    • Kровь для исследования на вещества, концентрация которых в крови изменяется циклически, должна забираться в строгом соответствии с физиологическими циклами. Например, концентрация ФСГ и ЛГ определяется на 5-7 день менструального цикла.
    • Исключить прием алкоголя накануне исследования.
    • Не курить минимально в течение 1 часа до исследования.
    • Анализ мочи

      Общий анализ мочи

    • Накануне сдачи анализа рекомендуется не употреблять овощи и фрукты, которые могут изменить цвет мочи (свекла, морковь и пр.), не принимать диуретики.
    • Перед сбором мочи надо произвести тщательный гигиенический туалет половых органов.
    • Женщинам не рекомендуется сдавать анализ мочи во время менструации.

    Соберите утреннею мочу в контейнер. Для правильного проведения исследования при первом утреннем мочеиспускании небольшое количество мочи (первые 1 — 2 сек.) выпустить в унитаз, а затем, не прерывая мочеиспускания, подставить контейнер для сбора мочи, в который собрать приблизительно 50-100 мл мочи. Плотно закройте контейнер завинчивающейся крышкой.

    Специализированный пластиковый контейнер — оптимальное средство сбора и транспортировки мочи для лабораторных исследований. Спрашивайте в аптеках. Контейнер представляет собой широкогорлый градуированный полупрозрачный стаканчик емкостью 125 мл с герметично завинчивающейся крышкой. Контейнер стерилен, не требует предварительной обработки и полностью готов к использованию.

    Проба Нечипоренко

    Для анализа мочи по методу Нечипоренко — собирают утреннюю порцию в середине мочеиспускания («средняя порция»). Достаточно 15-25 мл.

    Сбор суточной мочи

    Для лабораторных исследований утром перед сбором мочи необходимо провести туалет наружных половых органов.

    Первую утреннюю порцию мочи не собирают, но отмечают время мочеиспускания. В дальнейшем собирают всю мочу, выделяемую за 24 часа от отмеченного времени первого мочеиспускания до того же часа через сутки.

    Сбор суточной мочи оптимально проводить в специализированный градуированный пластиковый контейнер на 2, 7 л, имеющий широкую горловину и рельефную ручку. Контейнер безопасен и удобен в обращении.

    Мочиться следует непосредственно в контейнер, после каждого мочеиспускания плотно завинчивать крышку. Мочу следует хранить в закрытом контейнере в холодильнике на нижней полке, не допуская замораживания.

    По окончании сбора (последнее мочеиспускание производится в то же время, которое отмечено как время первого мочеиспускания, но через сутки) мочу можно сдать в лабораторию: суточный объем мочи в закрытом контейнере взбалтывается, после чего в малый контейнер для клинического анализа мочи на 125 мл отливают порцию 100 мл. Всю мочу приносить не надо. В медцентре сообщите суточное количество мочи.

    Сбор суточной мочи по Зимницкому

    Собирается моча за сутки (8 порций в 8 контейнеров, каждые 3 часа). Первая утренняя порция мочи удаляется. Все последующие порции мочи, выделенные в течение дня, ночи и утренняя порция следующего дня собираются в разные контейнеры (50 мл), купленные в аптеке, на каждом подписывается время сбора.

    После завершения сбора мочи содержимое емкости точно измерить, обязательно перемешать и сразу же отлить в контейнер, купленный в аптеке. Контейнер принести в медицинский центр для исследования. Всю мочу приносить не надо. В медцентре сообщите суточное количество мочи.

    Моча на сахар

    Из суточного количества мочи доставляют в лабораторию 50-100 мл мочи или 3 порции мочи, собранной за сутки с перерывами в 8 ч:

    1 порция — с 8 до 16 часов

    2 порция —с 16 до 24 часов

    3 порция —с 24 до 8 часов утра (по указанию врача).

    Моча для проведения ПЦР–исследований (туберкулёз, ЦМВ, ИППП)

    Перед сбором мочи необходимо провести туалет наружных половых органов. Мочу собирают утром натощак после сна или не ранее чем через 2-3 часа после последнего мочеиспускания в стерильный пластиковый контейнер. Минимальный объем мочи, необходимый для проведения анализа, составляет 20 мл.

    Моча для проведения бактериологических исследований

    Пробу мочи собирают только в стерильную посуду.

    Мочу необходимо сдать до начала антибактериального лечения или спустя 3 дня после терапии. Если больной принимает антибактериальные препараты, то нужно решить вопрос об их временной отмене.

    После тщательного туалета наружных половых органов первую порцию мочи cпустить в унитаз, среднюю порцию в количестве 3-5 мл собрать в стерильную герметически закрывающуюся посуду. Мочу доставить в лабораторию в течение 1-2 часов, если такой возможности нет, то хранить пробу мочи можно в холодильнике не более суток. При транспортировке пробы нужно следить, чтобы пробка не промокла.

    Анализ кала

  • Нельзя проводить исследования кала раньше чем через 2 дня после клизмы, рентгенологического исследования желудка и кишечника, колоноскопии.
  • Нельзя накануне принимать лекарственные вещества в том числе:- слабительные; — активированный уголь; — препараты железа, меди, висмута; — использовать ректальные свечи на жировой основе.
  • Не допускать попадания в образец мочи или воды.
  • Проводить исследование кала у женщин во время менструации
  • Собирать кал для исследования следует утром. Если это затруднительно, можно подготовить пробу заранее, но не более чем за 8 часов перед сдачей кала в лабораторию. В этом случае хранить пробу следует в холодильнике (не замораживать).

    Тщательный туалет наружных половых органов и области заднего прохода. Предварительно помочиться. Дефекацию производить в сухую, чистую емкость: судно или ночную вазу. Перенести пробу кала объемом 3-5 куб. см в заранее подготовленныйь чистый сухой контейнер для хранения и транспортировки.

    Кал на скрытую кровь

    Больной за 3-5 дней до исследования не должен есть мясо, рыбу, томаты (их можно заменить молочно-крупяными блюдами). Пациент не должен чистить зубы. Материал собирается на четвертый день в чистый сухой контейнер для хранения и транспортировки.

    Семенная жидкость (спермограмма)

    Требуется полное половое воздержание в течение 3-5 дней перед исследованием, но не более 7 дней. В направлении необходимо указать принимаемые в данный момент медикаментозные препараты (лекарства). Нельзя собирать материал из презерватива. Сбор материала лучше проводить в утренние часы.

    Бактериологические исследования

    Отделяемое из глаз

    Материал забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики. Не менее чем за 5-6 часов до исследования отменяют все медикаменты и процедуры. Взятие материала производит врач отдельным тампоном для каждого глаза.

    Конъюнктива

    При наличии обильного гнойного отделяемого стерильным сухим ватным тампоном берут гной с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели. Необходимо следить, чтобы ресницы не касались тампона (придерживать веки руками).

    Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.

    Материал для исследования берут после обезболивания стерильным сухим ватным тампоном.

    Отделяемое из носа

    Материал из носовой полости забирают сухим стерильным ватным тампоном, который вводят вглубь полости носа. Для каждого носового хода используется отдельный тампон.

    Отделяемое носоглотки

    Материал из носоглотки берут стерильным заднеглоточным ватным тампоном, который вводят через носовое отверстие в носоглотку. Если при этом начинается кашель, тампон не удаляют до его окончания. Для проведения анализов на дифтерию исследуют одновременно пленки и слизь из носа и глотки.

    Материал из полости рта

    Материал из ротовой полости берут натощак или через 2 часа после еды стерильным ватным тампоном со слизистой оболочки или ее пораженных участков у выходов протоков слюнных желез, поверхности языка, из язвочек. При наличии пленки последнюю снимают стерильным пинцетом.

    Материал из ушей

    Материал при воспалении среднего уха берет врач. Кожа прилегающих областей обрабатывается раствором антисептика.

    ПЦР исследования

    Общие рекомендации во взятию биоматериала для ПЦР исследования

    1. Различные микроорганизмы имеют свои особенности локализации, пути распространения и выделения, что следует учитывать при выборе места взятия биоматериала.

    2. Взятие биоматериала, по возможности, должно проводиться в период обострения инфекции. За несколько дней до исследования необходимо прекратить прием химиопрепаратов. Контроль эффективности лечения должен проводиться не ранее чем через 3-4 недели после окончания терапии.

    3. Объём отбираемого биоматериала не должен быть избыточным, т. к. вместе с возбудителем в пробу попадают вещества, которые могут вызывать ингибирование ПЦР или способствовать деградации ДНК при хранении и транспортировке. При взятии мазков и соскобов достаточно получить материал в объёме «спичечной головки».

    4. Для взятия проб необходимо пользоваться только одноразовым инструментом и стерильными пластиковыми контейнерами (или пробирками с транспортной средой) с плотно закрывающейся крышкой.

    Рекомендации женщинам по подготовке к сдаче мазка на ПЦР, РИФ, посева на флору, микоплазму, трихомонаду, грибковую инфекцию.

    • Нельзя проводить такие исследования в период приема любых антибактериальных препаратов.
    • Эти исследования не сдаются в период менструации и в течение 1-2 дней после её окончания.
    • За 2-3 дня до визита в клинику следует прекратить использование любых влагалищных таблеток, шариков, свеч — и лечебных, и противозачаточных (Фарматекс, Пантекс-Овал, клион Д, Полижинакс и прочие).
    • Накануне вечером и с утра в день взятия мазка не следует подмываться и спринцеваться.
    • ВАЖНО! Нельзя брать мазки на ПЦР после проведения кольпоскопических проб.
    • Материал из уретры

      Перед взятием материала пациенту рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 1,5-2 часов. Непосредственно перед взятием материала наружное отверстие уретры необходимо обработать тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором. При наличии гнойных выделений соскоб рекомендуется брать через 15-20 мин. после мочеиспускания, при отсутствии выделений необходимо провести массаж уретры с помощью зонда для взятия материала. У женщин перед введением зонда в уретру проводится ее массаж о лобковое сочленение. В уретру у женщин зонд вводится на глубину 1,0-1,5 см, у мужчин — на 3-4 см, и затем делается несколько осторожных вращательных движений. У детей материал для исследования берут только с наружного отверстия уретры. После взятия материала зонд переносят в упаковку зонда, либо вносят в пробирку с транспортной средой и тщательно отмывают, пробирка закрывается и маркируется, после чего материал доставляется в лабораторию.

      Материал из цервикального канала

      Перед взятием материала необходимо удалить ватным тампоном слизь и затем обработать шейку матки стерильным физиологическим раствором. Зонд вводится в цервикальный канал на глубину 0,5-1,5 см, материал собирается осторожными вращательными движениями. При наличии эрозий цервикального канала необходимо их обработать стерильным физиологическим раствором, материал следует брать на границе здоровой и измененной ткани. При извлечении зонда необходимо полностью исключить его касание со стенками влагалища. После взятия материала зонд переносят в упаковку зонда, либо вносят в пробирку с транспортной средой и тщательно отмывают, пробирка закрывается и маркируется, после чего материал доставляется в лабораторию.

      Материал из влагалища

      Материал должен быть взят до проведения мануального исследования. Зеркало перед манипуляцией можно смочить горячей водой, применение антисептиков для обработки зеркала противопоказано. В случае избытка слизи или обильных выделений необходимо удалить их стерильным ватным тампоном. Влагалищное отделяемое собирают стерильным одноразовым зондом из заднего нижнего свода или с патологически измененных участков слизистой. У девочек материал нужно забирать со слизистой оболочки преддверия влагалища, в отдельных случаях — из заднего свода влагалища через гименальные кольца. После взятия материала зонд переносят в упаковку зонда, либо вносят в пробирку с транспортной средой и тщательно отмывают, пробирка закрывается и маркируется, после чего материал доставляется в лабораторию.

      Секрет предстательной железы

      Перед взятием секрета простаты головка полового члена обрабатывается стерильным ватным тампоном, смоченным физиологическим раствором. После предварительного массажа простаты через прямую кишку врач проводит массаж с надавливанием несколькими энергичными движениями от основания к верхушке полового члена. Затем из кавернозной части выдавливается 0,5-1 мл простатического секрета, который собирается в сухую стерильную ёмкость. Материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 1-3 часов, транспортировка должна производиться только в сумке-холодильнике.

      Материал с конъюнктивы глаз

      При наличии обильного гнойного отделяемого его убирают стерильным ватным тампоном, смоченным физиологическим раствором. Соскоб берут с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели. При взятии соскоба необходимо придерживать веко руками, чтобы при моргании ресницы не касались зонда. После взятия материала зонд переносят в упаковку зонда, либо зонд вносят в пробирку с транспортной средой и тщательно отмывают, пробирка закрывается, маркируется и доставляется в лабораторию.

      Материал с задней стенки глотки

      Взятие материала проводится натощак или не ранее, чем через 2-4 часа после еды. Одноразовый зонд вводят за мягкое небо в носоглотку и проводят по задней стенке глотки. Если целью исследования являются миндалины, зонд вводится в лакуны миндалин и там ротируется. После взятия материала зонд переносят в упаковку зонда, либо вносят в пробирку с транспортной средой и тщательно отмывают. Пробирка закрывается, маркируется и доставляется в лабораторию.

      Материал из носоглотки

      Взятие материала проводится натощак или не ранее, чем через 2-4 часа после еды. При взятии материала необходимо хорошее освещение, пациент сидит против источника света, корень языка придавливают шпателем, материал берут стерильным зондом, не касаясь языка, слизистой щек и зубов. После взятия материала зонд переносят в упаковку зонда, либо вносят в пробирку с транспортной средой и тщательно отмывают, пробирка закрывается, маркируется и доставляется в лабораторию.

      Материал из зубодесневых карманов

      Мазки из зубодесневого кармана собираются в стерильную пробирку (типа эппендорф) с физиологическим раствором. В этом случае пробирки могут храниться в холодильнике (+4. 6°С) не более 12 часов, а их транспортировка осуществляется в сумке-холодильнике. Можно брать мазки и жесткими уретральными зондами. В этом случае зонд после взятия материала помещают в его одноразовую упаковку, и в таком виде доставляют в лабораторию.

      За 12 часов до взятия (сбора) слюны исключается прием пищи, алкоголя и лекарственных препаратов. Непосредственно перед сбором слюны необходимо исключить использование зубной пасты и удалить зубные протезы. Перед тем, как собрать слюну, необходимо почистить зубы без зубной пасты, затем хорошо прополоскать рот без использования раздражающих средств. Слюну выплевывают или отсасывают со дна рта одноразовым шприцем и переносят в пробирку (типа эппендорф). Слюна может храниться в холодильнике (+4. 6°С) не более 12 часов, транспортировка осуществляется без охлаждения.

      Ректальные мазки на кишечную группу

      В прямую кишку вводят стерильный одноразовый зонд, вращательными движениями собирают материал, зонд вынимают и помещают в стерильную пробирку, которую доставляют в лабораторию.

      После тщательного туалета полости рта (чистка зубов и полоскание кипячёной водой) в стерильную посуду собирают утреннюю порцию мокроты. Диагностическую ценность представляет мокрота слизистого или слизисто-гнойного характера, а также мокрота, содержащая плотные белесоватые включения, и мокрота, окрашенная в желтоватый, серый или бурый цвет. Достаточный для исследования объём мокроты — 3-5 мл. Для повышения информативности возможно повторное (до 3 раз) исследование мокроты, что позволяет повысить число положительных находок.

      Если мокрота выделяется нерегулярно или в скудном количестве, накануне вечером и рано утром в день сбора мокроты следует применить отхаркивающие препараты или раздражающие ингаляции. Приготовление мазков из материала, полученного таким способом, должно быть произведено в день его сбора. При отсутствии мокроты, невозможности проведения аэрозольной ингаляции или ей безуспешности для исследования на микобактерии следует исследовать промывные воды бронхов или желудка.

      Промывные воды желудка

      Исследуются преимущественно у детей младшего возраста, плохо откашливающих мокроту и часто её проглатывающих. Во избежание смешивания проглоченной мокроты с пищей промывные воды желудка следует брать натощак. Последний приём пищи должен быть не менее чем за 12 часов до взятия промывных вод желудка. Перед взятием материала для нейтрализации содержимого желудка пациент выпивает 100-150 мл раствора питьевой соды (1 чайная ложка на 1 стакан воды) на стерильной дистиллированной воде, после чего в желудок проводят стерильный желудочный зонд и собирают содержимое желудка в стерильный флакон. Материал немедленно доставляют в лабораторию и обрабатывают, что исключает возможное деструктивное влияние желудочных ферментов на возбудителя.

      Просим соблюдать данные рекомендации для повышения точности исследования. Надеемся, что они помогут Вам правильно подготовится к исследованию и получить надежные результаты.

      rammedic.ru

      Общий анализ кала (копрограмма)

      Общий анализ кала или копрограмма, является одним из важных методов исследования функции органов пищеварительной системы, с расширенным набором показателей. Анализ кала дает возможность изучить работу пищеварительных процессов организма, скорость прохождения пищи по желудочно-кишечному тракту. Копрограмма позволяет выявить заболевания желудка, тонкого и толстого кишечника, поджелудочной железы, печени, желчного пузыря, выявить паразитарные заболевания (гельминтозы, лямблии и др.). Анализ кала используется не только для диагностики заболеваний, но и позволяет следить за развитием и ходом болезни.

      Исследования включают в себя несколько этапов изучения:

      1. Физические свойства кала;
      2. Химическое исследование;
      3. Микроскопическое исследование;
      4. Бактериологическое исследование;

      Физические свойства.

      В процессе анализа изучается внешний вид материала. При визуальном осмотре определяют суточное количество кала, его консистенцию, форму, цвет, запах, наличие патологических примесей и микроорганизмов, наличие не переваренной пищи, паразитов.

      Химическое исследование кала.

      Включает в себя определения содержания в кале крови, которую не видно не вооруженным взглядом, билирубина, стеркобилина, и др. веществ.

      Бактериологическое исследование кала.

      Обычно проводиться для выявления дисбактериоза, позволяет выявить нарушение состава микрофлоры организма, болезнетворных бактерий.

      Микроскопическое исследование.

      Позволяет оценить степень пищеварения пищи, наличие микро паразитов, дрожжевых грибов. Так же исследование выявляет различные патологические включения, мышечные волокна, крахмал, клетчатку, кристаллические образования, клетки крови и эпителия.

      Правила сбора кала на анализ

      Для более точных результатов анализа, существуют некоторые правила сбора материала. Первое что рекомендуется сделать , это перед сдачей анализа, за несколько дней придерживаться определенной диеты. В идеале она состоит из употребления пищи с дозированным содержанием белков, жиров и углеводов в течении 3-4 дней. Приведем в пример такие диеты как: Диета Шмидта, диета Певзнера.

      Диета Шмидта.

      Дневной рацион включает в себя1-1,5 литра молока, 2-3 яйца всмятку, белый хлеб с маслом, 125 грамм рубленного мяса, 200грамм картофельного пюре, 40гр. отварной овсяной крупы. Общая суточная калорийность 2250ккал. Прием пищи распределяется на 5 раз. После диеты Шмидта при нормальном пищеварении, остатки пищи не обнаруживаются.

      Диета Певзнера.

      Ее суть в том, что бы сделать максимальную нагрузку на организм здорового человека. При выборе этой диеты, необходимо учитывать состояние органов пищеварения. В ее состав входит: 400гр белого хлеба, 250 гр. мяса жареного, 100гр. масла, 40гр. сахара, гречневая и рисовая каша, жареный картофель, салат, квашенная капуста, компот из сухофруктов и яблоки. Калорийность достигает 3250ккал. Эта диета позволяет выявить даже небольшую степень нарушения пищеварения.

      При отсутствии возможности воспользоваться этими диетами, рекомендуется соблюдать хотя бы элементарные правила: не употреблять в пищу зеленые овощи, помидоры, свеклу, а включить в рацион овощное пюре, каши, молочные продукты.

      Обычно кал для исследования берется утром, после сна. Пациент опорожняет кишечник в судно. Деревянной лопаточкой или шпателем набирают небольшое количество кала и кладут в чистую посуду и плотно закрывают. Для исследования достаточно(10-15гр.) кала.

      Основные правила при сборе кала:

    • Перед сбором кала следует тщательно вымыть область половых органов и заднего прохода;
    • Женщинам не рекомендуется проводить сбор кала во время менструаций, т.к. в кале не должно быть примеси мочи и менструальной крови;
    • Не рекомендуется сбор материала, если вам недавно производилось рентгенологическое исследование пищеварительной системы с помощью бария;
    • Не рекомендуется сбор после клизмы, приема медикаментов влияющих на перистальтику (белладонна, пилокарпин);
    • Не рекомендуется после введения свечей, препаратов влияющих на окраску кала;
    • Кал для исследования, должен быть получен во время самопроизвольной дефекации (не допустимо, использовать какие либо слабительные средства, ускоряющие акт дефикации;

      Для исследования кала на яйца глистов или присутствие простейших, испаражения должны быть свежие и сохраненные до момента доставки в лабораторию в теплом виде.

      Для бактериологического исследования кала, в бактериологической лаборатории получают специальную стерильную пробирку с ватным тампоном, хорошо навернутым на проволоку. Пациент укладывается на правый бок, левой рукой раздвигают ягодицы, вращательными движениями вводят тампон, вынув кладут в пробирку не прикасаясь к краям и стенке.

      Для исследования на скрытую кровь, пациента готовят в течении трех суток, из рациона исключаются мясные и грибные продукты, а так же лекарства содержащие йод, бром. Железо. На четвертые сутки собирают кал и отправляют в лабораторию.

      При сильных запорах, когда получить самостоятельно , проблематично, проводят массаж толстой кишки. Если это не помогает, прибегают к помощи очистительной клизмы. Для анализа берется плотная часть кала.

      Результаты исследования кала

      Нормальные показатели.

      Нормальный кал имеет плотную консистенцию и цилиндрическую форму(оформленный кал). Цвет коричневый без резкого запаха. При его визуальном осмотре не должно быть видно остатков от переваренной пищи, и паразитов.

      Пробы на скрытую кровь, белки, билирубин в норме должен быть отрицательным, а проба на стеркобилин положительной, так как этот пигмент придает калу характерный цвет.

      При микроскопии в кале не должно быть обнаружено клеток крови, мышечного волокна, соединительной ткани, жировых включений, крахмала, яйца глист, дрожжевых грибов, простейших(амебы, лямблии). Рака анализа кала необходима для врача, для того что бы выявить наличие заболеваний, и более точно поставить диагноз пациенту.

      www.ixtira.net

      Правила забора материала для микробиологического исследования

      Правила забора материала для микробиологического исследования

      Биологический материал целесообразно получать до начала антимикробной терапии.

    • Материал для бактериологического исследования берут непосредственно из очага инфекции или исследуют клинически значимый биологический материал.
    • Необходимо соблюдать асептику, избегая контаминации биологического материала посторонней микрофлорой.
    • Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования.
    • Собирают материал в стерильную посуду с пробками, полученную в микробиологической лаборатории: для взятия отделяемого из раны, мазков со слизистых оболочек, из глаза, уха, носа, зева, цервикального канала, влагалища, анального отверстия следует использовать стерильные ватные тампоны, для крови, гноя, спинномозговой жидкости и экссудатов используют стерильные шприцы и специализированные транспортные среды, для мокроты, мочи и кала — стерильные плотно закрывающиеся небьющиеся контейнеры.
    • Внимание: необходимо следить за сроками годности посуды, полученной в лаборатории. Если посуда, стерилизуемая в лаборатории, не использована в срок, указанный на этикетках её необходимо вернуть в лабораторию для повторной стерилизации.

    • Нативный материал доставляют в лабораторию в максимально короткие сроки (для большинства образцов не позднее 1,5-2 ч после их получения). Допускается хранение материала в холодильнике при 4° С (это не относится к биологическому материалу, полученному из стерильных в норме локусов: ликвору, крови, внутрисуставной и плевральной жидкости!).
    • При использовании транспортных сред биологический материал можно хранить в течение 24 ч.
    • Жидкий биологический материал можно транспортировать непосредственно в шприце, на кончик которого надет стерильный колпачок или загнутая под углом игла.
    • Для исследования на анаэробы биологический материал необходимо помещать в анаэробные условия. Для жидких образцов (кровь, гной, экссудат, жидкости из стерильных полостей) используют специальные флаконы с жидкой питательной средой, заполненные газовой смесью определенного состава, куда из шприца уколом иглы через резиновую плотно завальцованную крышку вносят материал. Можно использовать анаэробные коммерческие тампоны с транспортной средой.
    • Транспортировка осуществляется в металлических биксах (пеналах), термоконтейнерах, которые должны легко подвергаться обработке.
    • К материалу прилагают сопроводительный до­кумент, где указывают наименование, источник и метод получения биологического материала, дату и время его взятия; ФИО, пол и возраст больного; название учреждения, отделения, № палаты; пред­полагаемый диагноз инфекционной патологии и предшествующую антибактериальную терапию; фамилию и подпись врача, направившего материал для проведения бактериологического исследова­ния.
    • Внимание: погрешности в правилах сбора материала для микробиологического исследования приводят к ошибкам в диагностике возбудителя и определении его антибиотикочувствительности.

      Исследование крови

    • Для взятия крови используют стерильные шприцы или системы для одноразового пользования.
    • Кровь берут во время подъёма температуры из периферической вены с соблюдением правил асептики и мер индивидуальной защиты, предусмотренных при работе с кровью (использовать резиновые перчатки).
    • Кровь засевают в питательные среды сразу после взятия у постели больного или процедурной.
    • Перед использованием флаконов визуально определяют прозрачность среды, любое помутнение свидетельствует об их непригодности.
    • При подозрении на анаэробную инфекцию необходимо одномоментно собирать кровь в два флакона – с питательными средами для аэробного и анаэробного культивирования.
    • Не следует брать кровь из сосудистых катетеров, кроме случаев, когда предполагается инфекция катетерного происхождения.
    • Забор и посев крови
      Для предотвращения контаминации кожу пациента над пунктируемой веной тщательно обработать следующей последовательности:

    • 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком)
    • 5% настойкой йода (или йодопирона, йодоната, хлоргексидина) начиная обработку от центра будущего прокола к периферии — 30 секунд
    • этиловым 70% спиртом (или заменяющим его антисептиком)
    • дают высохнуть обработанному участку кожи
    • не пальпируя вену повторно, производят венепункцию
    • вновь обрабатывают участок 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком).
    • При аллергической реакции на йод кожу дважды обрабатывают 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком).
    • Использование сред, приготовленных в лаборатории:
      Среды в стеклянных флаконах, закрытые стерильными ватно-марлевыми пробками и предохранительными стерильными бумажными колпачками:
      — двухфазная среда» (комбинация плотной и жидкой среды в одном флаконе) – для роста аэробных микроорганизмов
      — полужидкие специальные среды — для роста анаэробных микроорганизмов

    • Посев осуществляют во флаконы со средами над пламенем спиртовой горелки.
    • Взятие и посев крови осуществляют два человека – в то время как один обрабатывает кожу пациента, пунктирует вену и берёт кровь, другой — над пламенем спиртовки
    • Открывает пробки флаконов, подставляет флаконы со средой под струю крови из шприца или системы, обжигает горлышки и пробки флаконов и закрывает их.
    • Рекомендуемое соотношение объёмов крови и среды 1:10 (10 мл у взрослых, 5 мл у детей)
    • Использование коммерческих сред:
      — для аэробных микроорганизмов (с зелёной крышкой)
      — для анаэробных микроорганизмов (с красной крышкой)
      — педиатрические флаконы – (с жёлтой крышкой) для исследования крови в объёме до 5 мл

    • Снимают предохранительную пластиковую крышку.
    • Дезинфицируют резиновую пробку флакона 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком).
    • Дают просохнуть обработанной поверхности.
    • Прокалывают пробку флакона иглой шприца и производят посев крови.
    • Объём исследуемой крови по прилагаемой инструкции — обычно 10-30 мл для взрослых и 1- 5 мл для детей до 12 л (метка на этикетке флакона позволяет оценить объём взятой крови).
    • Сначала производят посев в «анаэробный» флакон, затем – в «аэробный» во избежание попадания воздуха из шприца.
    • Перемешивают осторожно круговыми движениями содержимое флакона.
    • Маркируют флаконы и до транспортировки в лабораторию содержат в термостате или при комнатной температуре в защищённом от света месте (не в холодильнике!!)
    • Исследования крови и других жидкостей организма с помощью анализатора культур крови BacT/ALERT-
    • При отсутствии в отделении флаконов для гемокультур.

    • В исключительных случаях, при экстренной ситуации допускается использование 20-миллилитрового шприца с иглами.
    • В шприц предварительно набирают 0,5-0,7 мл стерильного гепарина.
    • Заменяют иглу.
    • Затем пунктируют вену, соблюдая правила асептики. Набирают 10-15- мл крови.
    • Перемешивают осторожным покачиванием с гепарином (иглу со шприца не снимают).
    • В этом же шприце с согнутой у основания иглой (или надетым стерильным колпачком) немедленно отправляют в лабораторию.
    • Исследование сосудистого катетера

    • Исследуют при подозрении на инфекцию катетерного происхождения.
    • В асептических условиях отрезают его дистальный (внутрисосудистый) конец около 5 см длиной.
    • Помещают в стерильный контейнер (пробирку).
    • Доставляют в лабораторию немедленно.
    • Важно не допускать высыхания образца.
    • Исследование ликвора

    • Спинномозговую жидкость получают при люмбальной пункции или пунции боковых желудочков мозга в объеме 3 -5 мл, помещают в стерильную, желательно центрифужную пробирку и немедленно доставляют в лабораторию.
    • Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая чрезмерного перегрева и особенно охлаждения (может быть использован термос). Охлаждение ликвора ниже 300 ведёт к гибели менингококков.
    • При невозможности немедленно доставить в лабораторию ликвор сохраняют при 370 в термостате.
    • При использовании коммерческих сред (BacT/ALERTFA и др.) свежевзятый ликвор в количестве 5-10 мл из шприца, проколов резиновую пробку, вносится во флакон со средой (см. исследование крови).
    • Исследование жидкостей организма из стерильных в норме полостей

    • Исследуют перитонеальную, синовиальную, плевральную, суставную, перикардиальную жидкости.
    • Для бактериологического исследования используют жидкости, взятые при пункции и аспирации.
    • Попавшие в шприц пузырьки воздуха удаляют и помещают жидкость в анаэробную транспортную систему или отправляют её в шприце, предварительно сняв (или загнув) иглу или надевают на канюлю защитный стерильный колпачок.
    • Минимальный объём жидкости для выделения бактерий 1-5 мл, для выделения грибов или микобактерий не менее 10 мл.
    • Избыток жидкости или гной транспортировать в стерильных контейнерах с завинчивающейся крышкой.
    • Взятие материала тампоном не предохраняет анаэробы от воздействия кислорода воздуха, не позволяет приготовить качественный препарат для микроскопии, не гарантирует выделение культуры при незначительном количестве микробов в образце.
    • Не рекомендуется использовать антикоагулянты (цитрат, этилендиаминтетрауксусную кислоту), подавляющие рост некоторых видов бактерий.
    • При необходимости лучше использовать гепарин.
    • При достаточном количестве жидкости можно производить посев из шприца во флаконы со средой для гемокультур в соотношении 1:5 — 1:10 (5-10 мл). Однако при этом становится невозможной прямая бактериоскопия материала, а сроки идентификации удлиняются на сутки в сравнении с изолятами, выделенными при первичном посеве на плотные среды.
    • Исследование материала при раневой инфекции

    • Взятие материала производит лечащий врач во время операции или перевязки.
    • В большинстве случаев исследуют поражённые ткани и аспираты.
    • Наиболее правильный способ взятия жидких материалов – объёмно с помощью стерильного шприца. Отбор материала тампоном производят только при невозможности осуществления объёмного метода.
    • Промыванием раневой поверхности физ. раствором удаляют местно применяемые антисептические и антибактериальные препараты.
    • Кожу вокруг раны обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной сухой салфеткой.
    • Все ёмкости с отобранным материалом плотно закрывают стерильными пробками.
    • Доставляют в лабораторию в течение 1 часа. При невозможности доставить материал в течение этого времени, он должен храниться в холодильнике, но не более 2 часов.
    • Можно использовать специальные транспортные контейнеры и пробирки со средами. На транспортной среде материал хранится 24 часа.

      Отделяемое открытых инфицированных ран
      Материал берут двумя стерильными тампонами (один для посева, второй — для бактериоскопии) круговыми вращательными движениями от центра к периферии поражённого участка помещают в стерильную пробирку.

      Отделяемое из дренажей.

    • Берут стерильным шприцем и в количестве 1-2 мл помещают в стерильную пробирку или доставляют в шприце.
    • Можно использовать для исследования концы удалённых дренажных трубок
    • Кусочки тканей
      Помещают в другую плотно закрывающуюся стерильную ёмкость (пробирку), содержащую небольшое количество стерильного физ. раствора.
      Глубокие раны или абсцессы.

    • Поверхность раны дезинфицируют 70% этиловым спиртом, затем 1-2% йодным раствором.
    • Материал берут из глубины, избегая контаминации поверхностной микрофлорой раны.
    • Биоптат с ожоговой поверхности
      Поверхность раны дезинфицируют и берут образец с помощью пункционной биопсии (3-4 мм) для количественного исследования.
      Язвы и узелковые утолщения

    • Пораженную область кожи дезинфицируют, удаляют поверхностный слой и делают соскоб со дна язвы или узелкового утолщения.
    • Если имеется экссудат, его собирают шпри­цем или стерильным тампоном.
    • Раны после укусов

    • Гнойное содержимое из раны получают шприцем после надреза, дренирования или поверх­ностной обработки инфицированной раны.
    • При свежих укусах бактериологическое ис­следование не проводят, так как в этот период труд­но выделить этиологически значимый микроорга­низм.
    • Кости

    • Материал получают при оперативном вмеша­тельстве. Образец помещают в стерильный контей­нер без формалина и других консервантов.
    • Для предотвращения высыхания образца в контейнер может быть добавлен стерильный физ.­раствор.
    • Материал при инфекциях верхних дыхательных путей
      Образцы из зева

    • Исследуют прежде всего для выявления α-гемолитических стрептококов группы А, H.influenzae( при эпиглотитах).При наличии специфического анамнеза проводят исследование для исключения гонококковой этиологии фарингита.
    • Не следует брать материал при воспалённом надгортаннике, так как может возникнуть обструкция дыхательных путей!
    • Мазок из зева следует брать до еды или через 2 — 3 часа после приёма пищи. Перед взятием пробы больному необходимо прополоскать рот тёплой кипячёной водой.
    • Аккуратно прижимая язык шпателем, вводят стерильный тампон между дужками миндалин и язычком.
    • Движением тампона вперёд и назад собирают материал с задней поверхности глотки, миндалин и участков воспаления или изъязвления слизистой.
    • Тампон помещают в стерильную пробирку, при необходимости используя транспортную среду.
    • Внимание: При взятии пробы со слизистой зева (глотки) нельзя касаться щёк, языка, дёсен, а также собирать слюну.

      Взятие материала при исследовании на возбудителей дифтерии.

    • Для взятия материала используют стерильные ватные сухие тампоны.
    • Материал из ротоглотки и носа берут отдельными тампонами, натощак или не ранее, чем через 2 часа после еды, при хорошем освещении с использованием шпателя, не касаясь тампоном языка, слизистых щек и зубов.
    • При наличии налетов материал следует брать с границы пораженных и здоровых тканей, слегка нажимая на них тампоном.
    • Для взятия материала из носа используют один тампон, который вводят сначала в один, а потом в другой носовой ход, не касаясь крыльев носа снаружи
    • Необходимо обеспечить доставку материала в лабораторию не позднее 2-х часов, а при использовании глицериновых тампонов — в течение 4-х часов.
    • Бактериологическое исследование носоглоточной слизи на менингококки

    • Исследуемый материал берут из задней стенки носоглотки натощак или через 3 — 4 часа после еды стерильным ватным тампоном, укрепленным на изогнутой проволоке.
    • Материал берут с обязательным надавливанием шпателем на корень языка. Тампон вводят концом кверху за мягкое небо в носоглотку и проводят 2 -3 раза по задней стенке.
    • При извлечении тампон не должен касаться зубов, слизистой щек, языка и язычка.
    • Материал может быть взят смоченным тампоном, который затем доставляют в лабораторию.
    • Питательную среду для смачивания тампонов получают в бактериологической лаборатории. Можно использовать специальные транспортные среды.
    • Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая охлаждения
    • Мазок со слизистой передних отделов полости носа.

    • Исследование обычно проводится для выявления носительства метициллинрезистентных штаммов S.aureus.
    • Мазок со слизистой носа берут одним стерильным тампоном.
    • Тампон вводится сначала в здоровую ноздрю до упора на уровне носовой раковины и вращательными движениями собирают материал со слизистой. Повторяют процедуру в другом носовом ходе.
    • Тампон помещают в стерильную пробирку.
    • Аспират из придаточных пазух

    • Исследуют при бактериальных синуситах помимо исследования микрофлоры носовой полости.
    • Материал отсылают в лабораторию в анаэроб­ной транспортной среде или непосредственно в шприце.
    • He рекомендуется исследовать промывную жидкость из носоглотки, так как образцы контаминируются нормальной микрофлорой верх­них дыхательных путей, что не позволяет правиль­но трактовать результаты анализа.
    • При хронических синуситах возможен прицельный забор материала для микробиологического исследования с использованием эндоскопов.
    • Исследование отделяемого уха
      Жидкость при тимпаноцентезе

    • Исследуют при среднем отите в случаях, если первичная терапия оказалась безуспешной или если тимпаноцентез проводился как лечебная процедура.
    • Очищают наружный слуховой проход слабым раствором детергента, после прокола барабанной перепонки врач-отоларинголог шприцем собирает жидкость и помещает ее в стерильный контейнер или отправляет в лабораторию в шприце с загнутой иглой или с защитным колпачком.
    • При невозмож­ности своевременной доставки целесообразно ис­пользовать транспортную среду.
    • При самопроизвольной перфорации барабан­ной перепонки экссудат собирают стерильным там­поном, используя слуховое зеркало. Однако в этом случае высока вероятность контаминации биологи­ческого материала эндогенной микрофлорой.
    • Материал при воспалении наружного уха.

    • Обрабатывают кожу 70% этиловым спиртом и промывают стерильным изотоническим раствором хлорида натрия (физраствором).
    • Материал из очага берут стерильным ватным тампоном. Тампон помещают в стерильную пробирку.
    • При поражении среднего и внутреннего уха исследуют пунктаты и материал, полученный во время оперативных вмешательств, собранные в стерильную пробирку или транспортную среду.
    • Исследование отделяемого глаз.

    • Накануне, за 6-8 часов (на протяжении ночи, предшествующей забору материала) отменяют все медикаменты и процедуры.
    • Материал забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики.
    • Отделяемое с конъюнктивы

    • Берут стеклянными стерильными палочками или платиновой петлей, предварительно фламбированной в пламени спиртовки и остуженной и погружают в 0,2 % сахарный бульон.
    • При наличии достаточно обильного гнойного отделяемого использую стерильные ватные тампоны (желательно коммерческие), которыми берут гной с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели.
    • Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками)
    • Край век.
      Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.
      Роговица.

    • Материал на исследование после обезболивания, можно взять платиновой петлёй или другим подходящим инструментом.
    • Если пациент применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность.
    • В кабинете врача производят посев на питательный бульон.
    • Материал при инфекциях нижних дыхательных путей

      Мокрота.

    • Исследуют свободно откашливаемую мокроту, утреннюю порцию, натощак
    • Пациент предварительно должен почистить зубы, дёсны, язык, слизистую оболочку щёк зубной щёткой и прополоскать рот кипяченой водой.
    • Если мокрота отделяется плохо, накануне пациенту дают отхаркивающие средства или проводят ингаляцию физ. раствором.
    • Мокроту собирают в стерильную посуду с крышкой.
    • Сроки доставки мокроты в лабораторию не должны превышать 1,5-2 часа от момента её получения (допускается хранение в холодильнике, но не более 6 часов), т.к. задержка ведёт к аутолизу S.pneumoniae, а за счёт размножения бактерий-контаминантов меняется истинное соотношение микрофлоры бронхиального секрета.
    • Качество собранной мокроты можно оценить по данным микроскопии нативных мазков по Граму.

      При наличии в мазке мокроты более 10 эпителиальных клеток в поле зрения и менее 25 полиморфно-ядерных лейкоцитов (ПЯЛ) при малом увеличении микроскопа (объектив Х10) высока вероятность контаминации образца содержимым полости рта (слюной). Дальнейшее исследование такого материала нецелесообразно, материал необходимо взять повторно.

      Трахеобронхиальные смывы

    • Исследуют при отсутствии мокроты или невозможности её выделить естественным путём.
    • Специальным шприцем в трахею вводят около 10 мл стерильного физ. раствора и собирают откашливаемый смыв в стерильную посуду.
    • Бронхиальные смывы, в том числе вблизи очага воспаления, могут быть сделаны с помощью бронхоскопа.
    • Недостатком является очень часто значительное разведение трахеобронхиального содержимого, что снижает возможность выделения бактерий, а концентрация их падает примерно в 100 раз по сравнению с мокротой.
    • Плевральная жидкость.

    • Кожу перед пункцией обрабатывают 70% этиловым спиртом, затем спиртовой настойкой йода, затем опять спиртом.
    • После прокола жидкость собирают шприцем в сте­рильную пробирку и незамедлительно отправляют в лабораторию.
    • Допускается посев плевральной жидкости (по 5 мл) в аэробные и анаэробные флаконы, ис­пользуемые для исследования крови.
    • Моча при инфекциях мочевыводящих путей

    • Исследуют утреннюю среднюю порцию (10-20мл) сво­бодно выпущенной мочи (за ночь концентрация бактерий в мочевом пузыре возрастает).
    • Не следует принуждать пациента к приему жидкости для фор­сирования диуреза, так как происходит разбавле­ние мочи и снижение числа бактерий.
    • Для сбора мочи используют стерильные ём­кости которые закрываются резиновой стерильной пробкой. Нельзя собирать мочу из мочеприемника или судна.
    • Перед взятием мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов с мылом и кипяченой водой во избежание излишней ее контамина­ции при мочеиспускании нормальной микрофло­рой промежности.
    • Доставка мочи в лабораторию должна осу­ществляться в максимально короткие сроки. Посев следует проводить не позднее 2 ч после взя­тия материала либо в течение 8 ч при условии ее хранения в холодильнике. (При 4°С число бакте­рий в моче обычно остается стабильным в преде­лах 24 ч).
    • Взятие мочи следует повторить, если нет ус­ловий для ее хранения в холодильнике, и с момента взятия образца прошло более 2 часов, в противном случае результаты анализа могут быть недостовер­ными.
    • Недопустимо бактериологическое исследова­ние мочи, собранной в течение суток.
    • Не рекомендуется исследовать мочу, полу­ченную при наличии постоянного катетера
    • Материал при инфекциях урогенитального тракта
      Исследование отделяемого женских половых органов
      Внимание: взятие материала для микробиологического исследования проводит акушер-гинеколог до проведения мануального исследования
      Амниотическаю жидкость
      Собирают через катетер, либо аспирируют при кесаревом сечении, либо пунктируют плодный пузырь.
      Материал из уретры

    • Собирают не ранее, чем через 1 ч по­сле мочеиспускания.
    • Отделяемое из уретры собирают стерильным ватным тампоном.
    • Если отделяемое получить не удается, наруж­ное отверстие уретры обмывают мылом и ополаски­вают кипяченой водой, вводят в уретру тонкий сте­рильный «уретральный» тампон на глубину 2-4 см, аккуратно вращают его в течение 2 сек., вынимают, по­мещают в соответствующую транспортную среду и доставляют в лабораторию.
    • Материал из вульвы, преддверия влагалища

    • Берут стерильным ватным тампо­ном.
    • При воспалении бартолиниевых желез произ­водят их пункцию.
    • Материал из влагалища.
      После введения зеркала и подъемника во вла­галище материал собирают стерильным ватным тампоном с заднего свода или с патологически из­мененных участков.
      Цервикальный канал.

      • Обнажают шейку матки с помощью зеркал и влагалищную ее часть тщательно обрабатывают ватным тампоном, смоченным стерильным физрас­твором или стерильной водой.
      • Тонкий стерильный ватный тампон осторожно вводят в цервикальный канал, не касаясь стенок вла­галища, и берут материал.
      • Для бактериологческого исследования можно использовать соскоб слизистой, полученный при диагностическом выскабливании стенок цервикального канала.
      • Матка.

      • Правильное взятие материала из матки может быть выполнено только при использовании специальных инструментов типа шприца-аспиратора., имеющего на зонде покрытие.
      • После прохождения зондом цервикального канала в полость матки раскрывают наружную оболочку зонда и набирают в шприц содержимое матки.
      • Материал из шприца помещают в стерильную пробирку.
      • Придатки матки.
        Материал из очага инфекции (гной, экссудат, кусочки ткани) получают при оперативном вмеша­тельстве или при диагностической пункции опухо­левидных образований, проводимой через влага­лищные своды.
        Приготовление мазков для микроскопии.

      • Помимо взятия материала на посев врач-гинеко­лог готовит мазки для микроскопии (не менее двух — для окраски по Граму и специальными метода­ми), используя отдельные стерильные тампоны или стерильные гинекологические инструменты.
      • Предметные стекла, предназначенные для приготовления мазков, маркируют.
      • Материал равномерно распределяют на пред­метном стекле осторожными движениями, избегая грубого втирания и резких штриховых движений инструментом.
      • Мазок высушивают при комнатной температу­ре, покрывают чистым предметным стеклом или по­мещают его в чашку Петри и отправляют в лаборато­рию.
      • Не допускается хранение влажного мазка между двумя стеклами.
      • Исследование отделяемого мужских половых органов
        Уретра.

      • Материал собирают не ранее 2 часов после мочеиспускания.
      • Вводят в уретру тонкий стерильный ватный тампон на глубину 2- 4 см, аккуратно вращают его в течение 1-2 сек., вынимают, помещают в транспорт­ную среду и доставляют в лабораторию.
      • Исследование секрета простаты.

      • Перед отбором проб необходимо тщательно вымыть наружные половые органы и область заднего прохода тёплой водой с мылом, затем сполоснуть тёплой водой.
      • Проводят массаж простаты через прямую кишку. Материал собирают в стерильную пробирку или стерильным ватным тампоном.
      • При наличии симптомов острого простатита массаж простаты не проводят.
      • Для получения более достоверных результа­тов можно дополнить это исследование бактерио­логическим исследованием мочи, полученной пе­ред и сразу после массажа простаты, что позволит выявить источник инфекции. Основным методом лабораторной диагностики простатита, позволяю­щим определить локализацию очага инфекции, яв­ляется метод Meares и Stamey: исследованию под­вергают первую порцию мочи, среднюю порцию мочи, секрет простаты и порцию мочи, полученные после массажа предстательной железы (так назы­ваемая 4-стаканная проба).
      • Пробы клинического материала доставить в лабораторию не замочив пробки, чтобы не исказить результат исследования.
      • Придатки яичек.
        Материал собирают путем аспирации с помо­щью шприца и иглы.

        Язва полового члена.

      • Очищают поверхность язвы тампоном, смо­ченным физ.раствором.
      • Производят соскоб язвы до появления сероз­ной жидкости.
      • Стерильной салфеткой удаляют жидкость и органические наслоения (следует из­бегать кровоточивости).
      • Надавливают у основания язвы до появления прозрачной жидкости, аспирируют ее шприцем с тонкой иглой, закрывают иглу защитным колпач­ком и транспортируют в лабораторию.
      • Соскобы мочеиспускательного канала, шейки матки для исследования на урогенитальный хламидиоз

      • Соскобы слизистых оболочек мочеиспускательного канала и шейки матки берут одноразовыми стерильными зондами, «щёточками», ложкой Фолькмана или аналогичными инструментами со слегка затуплёнными краями, соблюдая правила асептики и антисептики.
      • Наружные половые органы дезинфицируют, выделения удаляют тампонами или с помощью аспираторов.
      • При повышенной чувствительности слизистую оболочку предварительно анестезируют инстилляцией в мочеиспукательный канал 1-2 мл о.5% раствора дикаина.
      • Соскобы делают из глубины канала(до 6 см), со всех четырёх квадрантов.
      • Соскобы шейки матки берут после удаления слизистой пробки из глубины её канала, а также из влагалищной части шейки матки.
      • Соскобы берут осторожно, при лёгком надавливании. В материале должно быть возможно большее количество эпителиальных клеток и минимальное количество слизи, экссудата и примесей крови.
      • Соскобный материал распределяют тонким слоем на поверхность 8-миллиметровой лунки чистого обезжиренного предметного стекла так, чтобы все стороны тампона соприкасались с поверхностью стекла.
      • Мазок высушивают на воздухе 20-30 минут.
      • Допускается хранение мазка на стекле до фиксации 2-3 часа при комнатной температуре.
      • Мазки фиксируют соответственно методу окраски.
      • Материал при исследовании на анаэробы
        Общие показания к обследованию: сепсис неясной этиологии, гангрена, абсцессы, флегмона, перитонит, экссудативный плеврит, нагноения ран с подозрением на анаэробную инфекцию, гнойный артрит.
        Образцы клинического материала для исследования на анаэробы во избежания контакта с атмосферным воздухом получают при использовании инвазивных методов забора.

        Исследуемые материалы: кровь, плевральная, перитонеальная и сино­виальная жидкости, гной из абсцессов и других закрытых полостей (если объем гноя превышает 2 мл, то в пробирке под резиновой пробкой сохраняются относительно ана­эробные условия в течение нескольких часов), материалы из глубоких отделов свища (после очистки и асептической обработки наружного от­верстия) и ран.

        Если нет возможности использо­вать метод аспирации шприцем, материал берут стерильным ватным тампоном, который помещают в анаэробную транспортную среду сохранения и до транспортировки в лабораторию содержат при ком­натной температуре;
        Фрагменты костной и мышечной тканей размером 1×1 см, взятые из глубокого очага воспаления во время операции (если сроки доставки мате­риалов в лабораторию превышают 15-20 мин, фрагменты тканей погружают в небольшой объем стерильного физраствора).
        Не подлежат исследованию на анаэробы: отделяемое поверхностных ран и язв, мазки из зева, носа и ротовой полости,мазки из влагалища и цервикального канала, мокрота и бронхиальные смывы, моча (кроме мочи, полученной надлобковой пункцией мочевого пузыря), содержимое желудка, тонкого и толстого ки­шечника, фекалии (за исключением предполагаемой Clostridium difficile-ассоциированной диареи).

        Исследование фекалий на патогенные и условно-патогенные энтеробактерии и дисбактериоз.

      • При исследовании на дисбактериоз пациент за 1-3 дня до взятия пробы должен находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике, а также алкоголь, антимикробные лекарственные препараты и т. п.
      • Фекалии собирают сразу после дефекации из предварительно обработанного дез. раствором и тщательно промытого водой судна, горшка, специального лотка или с пеленки с помощью стерильной стеклянной палочки, проволочной петли или деревянного шпателя.
      • Порцию фекалий помещают в стерильный флакон.
      • Объём испражнений для исследования на патогенные энтеробактерии, флору и на дисбактериоз должен составлять 1/3 флакона, объёмом 20 мл.
      • При наличии в испражнениях патологических примесей (слизь, хлопья, гной) их следует включать в исследуемую пробу.
      • Материал доставляется в лабораторию в кратчайшие сроки
      • Испражнения для исследования на патогенные энтеробактерии можно получить непосредственно из прямой кишки с помощью ректальных, ватных или ватно — марлевых тампонов, укрепленных на металлической или деревянной палочке, вводя их круговыми движениями в прямую кишку на 6-8 см.
      • Исследование желчи (дуоденального содержимого) при инфекциях желчевыводящих путей

      • Желчь собирают при зондировании в проце­дурном кабинете отдельно по порциям: А, В и С (соответственно дуоденальное содержимое, пузырную желчь и желчь из желчных протоков) в три стерильные пробирки, либо во время оператив­ного вмешательства с помощью шприца в одну про­бирку.
      • Дуоденальное содержимое и желчь имеют зеленовато — желтый цвет и щелочную реакцию. Кислая реакция, белесоватый оттенок жидкости, наличие хлопьев, свидетельствует о примеси желудочного сока, такой материал не пригоден для исследования.
      • Полученные порции желчи доставляют в ла­бораторию не позднее 1 -2 ч от момента получения, следя за тем, чтобы пробирки находились в строго вертикальном положении
      • Микробиологическое исследование грудного молока.

      • Отбор проб грудного молока производится в поликлинике или стационаре в специально выделенном помещении.
      • Перед сцеживанием молока женщина должна вымыть руки с мылом, тщательно обрабатывает соски и околососковую область молочных желез отдельными ватными тампонами, смоченными 700 спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).
      • Молоко из правой и левой молочных желез собирается в отдельную посуду.
      • Первые 5-10 мл сцеженного молока исследованию не подлежат.
      • Последующие 3-5 мл сцеживаются в стерильные флаконы, которые закрываются стерильными пробками и доставляются в лабораторию не позднее 2-х часов в вертикальном положении во избежании опрокидывания и замачивания пробок.
      • До момента исследования молоко должно храниться в холодильнике.
      • Сцеженное накануне молоко исследованию не подлежит.
      • Правила забора и доставки материала от больных и контактныхв вирусологическое отделение МЛ ГЦГЭ.
        Пробы от больных гриппом и ОРВИ

      • Для вирусологического исследования отбирают при первом появлении клинических симптомов, т.е. в остром периоде заболевания (не позднее третьего дня), так как в этот период в носоглотке больного, а также в крови находится максимальное количество вируса.
      • Пробы немедленно доставляют в вирусологическое отделение МЛ ГЦГЭ (ул. Короля,23, тел. 200-92-51).
      • Материалом для исследования служат соскоб из носа и мазок из зева, а также сыворотки крови, взятые в начале болезни и в период выздоровления.
      • Соскоб из носа.
        Необходимо предварительно очистить полость носа от слизи ( взрослым – высморкаться, детям – очистить с помощью ватных турунд). Тампон вводят на глубину 2-3- см до нижней раковины, затем слегка опускают книзу , вводят в нижний носовой ход под нижнюю раковину, делают вращательное движение на пол оборота, таким образом, чтобы в мазке было как можно больше эпителиальных клеток. Удаляют тампон вдоль наружной стенки носовой полости, опускают в пробирку с физиологическим раствором. Палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой.
        Для ранней диагностики краснухи выявляют антиген в клетках цилиндрического эпителия носа от больных или контактных. В качестве материала для исследования служит соскоб из нижнего носового хода (см.п.1- соскоб из носа).
        Мазки из зева
        Рекомендуется мазки делать до еды. Мазки отобрать при помощи сухого стерильного ватного тампона на палочке, которым протереть поверхность миндалин, задней стенки глотки и небных дужек. Тампон не должен касаться языка и слизистой полости рта. После взятия мазка тампон поместить в среду (розового цвета) во флакон из-под пенициллина, палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой.

        Кровь для серологических исследований

      • Парные сыворотки исследуют для определения прироста титра антител к вирусам (во второй сыворотке по сравнению с первой).
      • Первую кровь берут в самом начале заболевания, вторую – 10-14 дней спустя.
      • Кровь в объеме не менее 1 мл берут в чистую центрифужную пробирку, отделяют сыворотку и помешают в пластиковую пробирку, которую хранят в морозильной камере до взятия второй сыворотки от того же больного.
      • В вирусологическое отделение МЛ обе сыворотки доставляются одновременно.
      • Результаты исследования зависят от качества доставляемого материала, от сроков забора и своевременной доставки в лабораторию.
      • Пробы фекалий
        Для обследования контактных с рота -, энтеро-, полиовирусной инфекцииями забирают пробы фекалий массой 1-2 г. в чистый флакон.

        sarstedt.com.ua

        Смотрите так же:

        • Чтобы не потерять стаж при увольнении Непрерывный стаж после увольнения по собственному желанию Смотрите также: Увольнение по собственному желанию — один из самых распространенных способов прекращения трудовых отношений. […]
        • Заявление об отказе на питание в школе образец Начисление алиментов после 18 лет – условия, порядок взыскания, размер выплат Платят ли алименты после 18 лет? Ст. 120 СК РФ закрепляет основания прекращения исполнения обязанностей по […]
        • Пособие на третьего ребенка в 2018 году в москве Выплаты при рождении третьего ребенка в 2018 году в Москве Государственные пособия – это существенная помощь, тем более, для многодетных семей. Можно выделить три основных направления […]
        • Работа и зарплата москва с проживанием Работа и зарплата москва с проживанием АНО Агентство по Развитию Человеческого Капитала На Дальнем Востоке • Москва Няня на полный день Энергичный человек для строительных работ в […]
        • Какая пенсия у 80 летних Пенсия после 80 лет в России Для улучшения качества жизни людей, достигших преклонного возраста, разработаны различные меры их государственной поддержки. Законодательством Российской […]
        • По достижению 80 лет какая будет доплата к пенсии Страховая пенсия До 2015 года пенсия называлась трудовой и имела части страховую и накопительную; теперь это самостоятельные виды пенсий. Страховая пенсионная выплата подразделяется на три […]